Köszönjük, hogy meglátogatta a Nature.com oldalt.Olyan böngészőverziót használ, amely korlátozott CSS-támogatással rendelkezik.A legjobb élmény érdekében javasoljuk, hogy használjon frissített böngészőt (vagy tiltsa le a kompatibilitási módot az Internet Explorerben).Ezenkívül a folyamatos támogatás érdekében stílusok és JavaScript nélkül jelenítjük meg az oldalt.
Egyszerre három diából álló körhinta jeleníti meg.Az Előző és a Következő gombokkal egyszerre három dián lépkedhet, vagy a végén lévő csúszkagombokkal egyszerre három dián.
Ebben a tanulmányban egy módszert dolgoztak ki illékony fenolok, cianidok, anionos felületaktív anyagok és ammónia nitrogén egyidejű meghatározására ivóvízben áramláselemző segítségével.A mintákat először 145 °C-on desztilláltuk.A desztillátumban lévő fenol ezután bázikus ferricianiddal és 4-amino-antipirinnel reagál, és vörös komplexet képez, amelyet 505 nm-en kolorimetriásan mérnek.A desztillátumban lévő cianid ezután reagál a klóramin T-vel, és cianokloridot képez, amely azután kék komplexet képez piridinkarbonsavval, amelyet kolorimetriásan mérnek 630 nm-en.Az anionos felületaktív anyagok a bázikus metilénkékkel reagálva vegyületet képeznek, amelyet kloroformmal extrahálnak, és savas metilénkékkel mosnak, hogy eltávolítsák a zavaró anyagokat.A kloroformban lévő kék vegyületeket kolorimetriásan határoztuk meg 660 nm-en.660 nm hullámhosszú lúgos környezetben az ammónia szaliciláttal és klórral reagál diklór-izocianursavban, és 37 °C-on indofenolkéket képez.Az illékony fenolok és cianidok 2–100 µg/l tömegkoncentrációja esetén a relatív szórások 0,75–6,10%, illetve 0,36–5,41%, a visszanyerési arányok pedig 96,2–103,6% és 96,0–102,4% voltak. .%.Lineáris korrelációs együttható ≥ 0,9999, kimutatási határok 1,2 µg/L és 0,9 µg/L.A relatív szórások 0,27-4,86% és 0,33-5,39%, a visszanyerések 93,7-107,0% és 94,4-101,7% voltak.Anionos felületaktív anyagok és ammónia-nitrogén tömegkoncentrációja esetén 10 ~ 1000 μg / l.A lineáris korrelációs együtthatók 0,9995 és 0,9999, a kimutatási határok 10,7 µg/l és 7,3 µg/l voltak.Nem volt statisztikai eltérés a nemzeti standard módszerhez képest.A módszer időt és erőfeszítést takarít meg, alacsonyabb kimutatási határt, nagyobb pontosságot és pontosságot, kevesebb szennyeződést, valamint nagyobb térfogatú minták elemzésére és meghatározására alkalmas.
Az illékony fenolok, cianidok, anionos felületaktív anyagok és az ammónium-nitrogén1 az érzékszervi, fizikai és metalloid elemek markerei az ivóvízben.A fenolos vegyületek számos alkalmazás alapvető kémiai építőkövei, de a fenol és homológjai is mérgezőek és biológiailag nehezen lebonthatók.Számos ipari folyamat során bocsátanak ki, és általános környezetszennyező anyagokká váltak2,3.Az erősen mérgező fenolos anyagok a bőrön és a légzőszerveken keresztül juthatnak be a szervezetbe.Legtöbbjük az emberi szervezetbe kerülve a méregtelenítési folyamat során elveszti mérgező hatását, majd a vizelettel ürül ki.A szervezet normál méregtelenítő képességének túllépése esetén azonban a felesleges komponensek felhalmozódhatnak különböző szervekben és szövetekben, ami krónikus mérgezést, fejfájást, kiütést, bőrviszketést, mentális szorongást, vérszegénységet és különféle neurológiai tüneteket okozhat 4, 5, 6,7.A cianid rendkívül káros, de a természetben elterjedt.Számos élelmiszer és növény tartalmaz cianidot, amelyet egyes baktériumok, gombák vagy algák termelhetnek8,9.Az öblíthető termékekben, például samponokban és testápolókban, anionos felületaktív anyagokat gyakran használnak a tisztítás megkönnyítésére, mivel ezek a termékek a fogyasztók által keresett kiváló hab- és habminőséget biztosítják.Sok felületaktív anyag azonban irritálhatja a bőrt10,11.Az ivóvíz, a talajvíz, a felszíni vizek és a szennyvizek nitrogént tartalmaznak szabad ammónia (NH3) és ammóniumsók (NH4+) formájában, amelyeket ammóniás nitrogénnek (NH3-N) neveznek.A háztartási szennyvízben található nitrogéntartalmú szerves anyagok mikroorganizmusok általi bomlástermékei főként ipari szennyvízből, például kokszosodásból és szintetikus ammóniából származnak, amelyek a víz ammóniás nitrogénjének részét képezik12,13,14.Számos módszer, köztük spektrofotometria15,16,17, kromatográfia18,19,20,21 és áramlási injekció15,22,23,24 használható ennek a négy szennyezőanyagnak a vízben történő mérésére.Más módszerekhez képest a spektrofotometria a legnépszerűbb1.Ez a tanulmány négy kétcsatornás modult használt az illékony fenolok, cianidok, anionos felületaktív anyagok és szulfidok egyidejű értékelésére.
AA500 folyamatos áramlási elemzőt (SEAL, Németország), SL252 elektronikus mérleget (Shanghai Mingqiao Electronic Instrument Factory, Kína) és Milli-Q ultratiszta vízmérőt (Merck Millipore, USA) használtunk.A munkában használt összes vegyszer analitikai minőségű volt, és minden kísérletben ionmentesített vizet használtunk.A sósavat, kénsavat, foszforsavat, bórsavat, kloroformot, etanolt, nátrium-tetraborátot, izonikotinsavat és 4-amino-antipirint a Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd.-től (Kína) vásároltuk.A Triton X-100-at, a nátrium-hidroxidot és a kálium-kloridot a Tianjin Damao Chemical Reagent Factory-tól (Kína) vásároltuk.A kálium-ferricianidot, a nátrium-nitroprusszidot, a nátrium-szalicilátot és az N,N-dimetil-formamidot a Tianjin Tianli Chemical Reagent Co., Ltd. (Kína) biztosította.A kálium-dihidrogén-foszfátot, a dinátrium-hidrogén-foszfátot, a pirazolont és a metilénkék-trihidrátot a Tianjin Kemiou Chemical Reagent Co., Ltd.-től (Kína) vásároltuk.A trinátrium-citrát-dihidrátot, a polioxietilén-lauril-étert és a nátrium-diklór-izocianurátot a Shanghai Aladdin Biochemical Technology Co., Ltd.-től (Kína) vásároltuk.Az illékony fenolok, cianidok, anionos felületaktív anyagok és vizes ammónia-nitrogén standard oldatait a Kínai Metrológiai Intézettől vásároltuk.
Desztillációs reagens: Hígítson fel 160 ml foszforsavat 1000 ml-re ionmentesített vízzel.Tartalék puffer: Mérjünk ki 9 g bórsavat, 5 g nátrium-hidroxidot és 10 g kálium-kloridot, és hígítsuk fel 1000 ml-re ionmentes vízzel.Abszorpciós reagens (hetente megújítva): Pontosan mérjen ki 200 ml törzspuffert, adjon hozzá 1 ml 50%-os Triton X-100-at (v/v, Triton X-100/etanol), és 0,45 µm-es szűrőmembránon történő szűrés után használja fel.Kálium-ferricianid (hetente megújítva): Mérjünk ki 0,15 g kálium-ferricianidot, és oldjuk fel 200 ml tartalék pufferben, adjunk hozzá 1 ml 50%-os Triton X-100-at, használat előtt szűrjük át 0,45 µm-es szűrőmembránon.4-Aminoantipirin (hetente megújítva): Mérjünk le 0,2 g 4-amino-antipirint, oldjuk fel 200 ml törzspufferben, adjunk hozzá 1 ml 50%-os Triton X-100-at, szűrjük át 0,45 µm-es szűrőmembránon.
Desztillációs reagens: illékony fenol.Pufferoldat: Mérjünk ki 3 g kálium-dihidrogén-foszfátot, 15 g dinátrium-hidrogén-foszfátot és 3 g trinátrium-citrát-dihidrátot, és hígítsuk fel 1000 ml-re ionmentesített vízzel.Ezután adjunk hozzá 2 ml 50%-os Triton X-100-at.Klóramin T: Mérjünk be 0,2 g klóramint T, és hígítsuk fel 200 ml-re ionmentesített vízzel.Kromogén reagens: A kromogén reagens: 1,5 g pirazolont teljesen feloldunk 20 ml N,N-dimetil-formamidban.B előhívó: Oldjunk fel 3,5 g hiszonikotinsavat és 6 ml 5 M NaOH-t 100 ml ionmentesített vízben.Használat előtt keverje össze az A és B előhívót, állítsa be a pH-t 7,0-ra NaOH-oldattal vagy HCl-oldattal, majd hígítsa fel 200 ml-re ionmentesített vízzel, és szűrje le későbbi felhasználáshoz.
Pufferoldat: Oldjunk fel 10 g nátrium-tetraborátot és 2 g nátrium-hidroxidot ionmentes vízben, és hígítsuk fel 1000 ml-re.0,025%-os metilénkék oldat: Oldjunk fel 0,05 g metilénkék-trihidrátot ionmentes vízben, és töltsük fel 200 ml-re.Metilénkék törzspuffer (naponta megújítva): hígítson fel 20 ml 0,025%-os metilénkék oldatot 100 ml-re törzspufferrel.Tegyük át választótölcsérbe, mossuk 20 ml kloroformmal, dobjuk ki a használt kloroformot, és mossuk friss kloroformmal, amíg a kloroformos réteg vörös színe el nem tűnik (általában 3-szor), majd szűrjük le.Bázikus metilénkék: hígítson fel 60 ml szűrt metilénkék törzsoldatot 200 ml törzsoldatra, adjon hozzá 20 ml etanolt, jól keverje össze és gáztalanítsa.Savas metilénkék: Adjon hozzá 2 ml 0,025%-os metilénkék oldatot körülbelül 150 ml ionmentesített vízhez, adjon hozzá 1,0 ml 1%-os H2SO4-et, majd hígítsa fel 200 ml-re ionmentesített vízzel.Ezután adjunk hozzá 80 ml etanolt, jól keverjük össze és gáztalanítsuk.
20%-os polioxietilén-lauril-éter oldat: Mérjünk ki 20 g polioxietilén-lauril-étert, és hígítsuk fel 1000 ml-re ionmentesített vízzel.Puffer: Mérjünk ki 20 g trinátrium-citrátot, hígítsuk fel 500 ml-re ionmentesített vízzel, és adjunk hozzá 1,0 ml 20%-os polioxietilén-lauril-étert.Nátrium-szalicilát oldat (hetente megújítva): Mérjünk le 20 g nátrium-szalicilátot és 0,5 g kálium-ferricianid-nitritet, és oldjuk fel 500 ml ionmentesített vízben.Nátrium-diklór-izocianurát oldat (hetente megújítva): Mérjünk le 10 g nátrium-hidroxidot és 1,5 g nátrium-diklór-izocianurátot, és oldjuk fel 500 ml ionmentes vízben.
Illékony fenol és cianid standardok 0 µg/l, 2 µg/l, 5 µg/l, 10 µg/l, 25 µg/l, 50 µg/l, 75 µg/l és 100 µg/l töménységű oldatok formájában. 0,01 M nátrium-hidroxid oldat.Az anionos felületaktív anyagot és ammónia-nitrogén standardot 0 µg/L, 10 µg/L, 50 µg/L, 100 µg/L, 250 µg/L, 500 µg/L, 750 µg/000 és 750 µg/l ionmentesített vízzel állítottuk elő. .megoldás.
Indítsa el a hűtési ciklus tartályát, majd (sorrendben) kapcsolja be a számítógépet, a mintavevőt és az AA500 host tápellátását, ellenőrizze a csővezetékek megfelelő csatlakoztatását, helyezze be a levegőtömlőt a légszelepbe, zárja le a perisztaltikus szivattyú nyomólemezét, helyezze a reagenscsövet tiszta vízbe középen.Futtassa a szoftvert, aktiválja a megfelelő csatornaablakot, és ellenőrizze, hogy a csatlakozó csövek megfelelően vannak-e csatlakoztatva, és nincs-e rés vagy légszivárgás.Ha nincs szivárgás, szívja fel a megfelelő reagenst.Miután a csatornaablak alapvonala stabilizálódott, válassza ki és futtassa a megadott metódusfájlt felderítéshez és elemzéshez.A műszer feltételeit az 1. táblázat mutatja.
A fenol és cianid meghatározására szolgáló automatizált módszerben a mintákat először 145 °C-on desztillálják.A desztillátumban lévő fenol ezután bázikus ferricianiddal és 4-amino-antipirinnel reagál, és vörös komplexet képez, amelyet 505 nm-en kolorimetriásan mérnek.A desztillátumban lévő cianid ezután klóramin T-vel reagál, és cianokloridot képez, amely kék komplexet képez piridinkarbonsavval, amelyet kolorimetriásan mérnek 630 nm-en.Az anionos felületaktív anyagok bázikus metilénkékkel reagálva vegyületeket képeznek, amelyeket kloroformmal extrahálnak és fázisszeparátorral elválasztanak.A kloroformos fázist ezután savas metilénkékkel mostuk, hogy eltávolítsuk a zavaró anyagokat, és ismét elválasztjuk egy második fázisszeparátorban.Kék vegyületek kolorimetriás meghatározása kloroformban 660 nm-en.A Berthelot-reakció alapján az ammónia 37 °C-on lúgos közegben, diklór-izocianursavban szaliciláttal és klórral reagál, indofenolkéket képezve.A reakcióban katalizátorként nátrium-nitroprusszidot használtunk, és a kapott színt 660 nm-en mértük.Ennek a módszernek az elvét az 1. ábra mutatja.
Illékony fenolok, cianidok, anionos felületaktív anyagok és ammóniás nitrogén meghatározására szolgáló folyamatos mintavételi módszer sematikus diagramja.
Az illékony fenolok és cianidok koncentrációja 2-100 µg/l, lineáris korrelációs együttható 1,000, regressziós egyenlet y = (3,888331E + 005)x + (9,938599E + 003).A cianid korrelációs együtthatója 1,000, a regressziós egyenlet pedig y = (3,551656E + 005)x + (9,951319E + 003).Az anionos felületaktív anyagok lineárisan függenek az ammónia-nitrogén koncentrációjától 10-1000 µg/L tartományban.Az anionos felületaktív anyagok és az ammónia-nitrogén korrelációs együtthatója 0,9995 és 0,9999 volt.Regressziós egyenletek: y = (2,181170E + 004)x + (1,144847E + 004) és y = (2,375085E + 004)x + (9,631056E + 003).A kontrollmintát 11 alkalommal folyamatosan mértük, és a módszer kimutatási határát elosztottuk a kontroll minta 3 szórásával a standard görbe meredekségénként.Az illékony fenolok, cianidok, anionos felületaktív anyagok és az ammónia-nitrogén kimutatási határa 1,2 µg/l, 0,9 µg/l, 10,7 µg/l és 7,3 µg/l volt.Az észlelési határ alacsonyabb, mint a nemzeti szabványos módszer, a részleteket lásd a 2. táblázatban.
Adjon magas, közepes és alacsony standard oldatokat a vízmintákhoz, analitok nyomait mentesen.A napon belüli és a napon belüli felépülést és pontosságot hét egymást követő mérés után számítottuk ki.Amint a 3. táblázat mutatja, a napon belüli illékony fenolos extrakció 98,0-103,6%, illetve 96,2-102,0%, a relatív szórással 0,75-2,80% és 1,27-6,10% volt.A napközbeni cianid visszanyerése 101,0-102,0%, illetve 96,0-102,4%, a relatív szórás pedig 0,36-2,26%, illetve 2,36-5,41% volt.Ezenkívül az anionos felületaktív anyagok napon belüli és napközbeni extrakciója 94,3-107,0%, illetve 93,7-101,6%, a relatív szórással 0,27-0,96% és 4,44-4,86% volt.Végül a napközbeni ammónia nitrogén visszanyerése 98,0–101,7%, illetve 94,4–97,8%, a relatív szórással 0,33–3,13%, illetve 4,45–5,39% volt.a 3. táblázat szerint.
Számos vizsgálati módszer, köztük spektrofotometria15,16,17 és kromatográfia25,26 használható a vízben lévő négy szennyezőanyag mérésére.A kémiai spektrofotometria egy újonnan kutatott módszer ezen szennyező anyagok kimutatására, amelyet a 27, 28, 29, 30, 31 nemzeti szabványok írnak elő. Olyan lépéseket igényel, mint a desztilláció és az extrakció, ami hosszú folyamatot eredményez, nem kellő érzékenységgel és pontossággal.Jó, rossz pontosság.A szerves vegyszerek széles körben elterjedt használata egészségügyi kockázatot jelenthet a kísérletezők számára.Bár a kromatográfia gyors, egyszerű, hatékony és alacsony kimutatási határokkal rendelkezik, négy vegyületet nem tud egyszerre kimutatni.A folyamatos áramlási spektrofotometriával végzett kémiai elemzés során azonban nem egyensúlyi dinamikus körülményeket használnak, amelyek a mintaoldat áramlási intervallumában a folyamatos gázáramláson alapulnak, megfelelő arányban és sorrendben adják hozzá a reagenseket, miközben a reakciót a keverőhurkon keresztül fejezik be. és detektálása a spektrofotométerben, előzőleg eltávolítva a légbuborékokat.Mivel a felderítési folyamat automatizált, a minták desztillálása és online előhívása viszonylag zárt környezetben történik.A módszer jelentősen javítja a munka hatékonyságát, tovább csökkenti az észlelési időt, egyszerűsíti a műveleteket, csökkenti a reagens szennyeződést, növeli a módszer érzékenységét és kimutatási határát.
Az anionos felületaktív anyagot és az ammónia-nitrogént 250 µg/l koncentrációban adtuk a kombinált teszttermékhez.Használja a standard anyagot az illékony fenol és cianid 10 µg/l koncentrációjú vizsgált anyaggá való átalakítására.Az elemzéshez és kimutatáshoz a nemzeti standard módszert és ezt a módszert alkalmaztuk (6 párhuzamos kísérlet).A két módszer eredményeit független t-próbával hasonlítottuk össze.Amint a 4. táblázat mutatja, nem volt szignifikáns különbség a két módszer között (P > 0,05).
Ebben a tanulmányban folyamatos áramlási elemzőt használtak illékony fenolok, cianidok, anionos felületaktív anyagok és ammónia-nitrogén egyidejű elemzésére és kimutatására.A vizsgálati eredmények azt mutatják, hogy a folyamatos áramlási elemző által használt minta térfogata kisebb, mint a nemzeti szabványos módszer.Alacsonyabb kimutatási határokkal rendelkezik, 80%-kal kevesebb reagenst használ, kevesebb feldolgozási időt igényel az egyes mintáknál, és lényegesen kevesebb rákkeltő kloroformot használ.Az online feldolgozás integrált és automatizált.A folyamatos áramlás automatikusan felszívja a reagenseket és a mintákat, majd a keverőkörön keresztül keveredik, automatikusan felmelegít, extrahál és kolorimetriával számol.A kísérleti folyamat zárt rendszerben zajlik, ami felgyorsítja az elemzési időt, csökkenti a környezetszennyezést és segíti a kísérletezők biztonságát.Nincs szükség olyan bonyolult műveleti lépésekre, mint a kézi desztilláció és extrakció22,32.A műszercsövek és tartozékok azonban viszonylag összetettek, és a vizsgálati eredményeket számos olyan tényező befolyásolja, amelyek könnyen a rendszer instabilitását okozhatják.Számos fontos lépést megtehet, hogy javítsa az eredmények pontosságát, és megakadályozza a kísérlettel való interferenciát.(1) Az illékony fenolok és cianidok meghatározásakor figyelembe kell venni az oldat pH-értékét.A pH-nak 2 körül kell lennie, mielőtt belép a desztillációs tekercsbe.3-nál nagyobb pH-értéken az aromás aminok is desztillálhatók, és a 4-amino-antipirinnel végzett reakció hibákhoz vezethet.Szintén 2,5-nél nagyobb pH-értéknél a K3[Fe(CN)6] visszanyerése 90%-nál kisebb lesz.A 10 g/l-nél nagyobb sótartalmú minták eltömíthetik a desztillációs tekercset és problémákat okozhatnak.Ebben az esetben édes vizet kell hozzáadni a minta sótartalmának csökkentése érdekében33.(2) A következő tényezők befolyásolhatják az anionos felületaktív anyagok azonosítását: A kationos vegyszerek erős ionpárokat alkothatnak az anionos felületaktív anyagokkal.Az eredmények torzíthatnak az alábbi esetekben is: 20 mg/l-nél nagyobb huminsav-koncentráció;nagy felületi aktivitású vegyületek (pl. egyéb felületaktív anyagok) > 50 mg/l;erős redukálóképességű anyagok (SO32-, S2O32- és OCl- );színes molekulákat alkotó anyagok, amelyek kloroformban bármilyen reagenssel oldódnak;néhány szervetlen anion (klorid, bromid és nitrát) a szennyvízben34,35.(3) Az ammónia-nitrogén kiszámításakor a kis molekulatömegű aminokat kell figyelembe venni, mivel ezek ammóniával való reakciója hasonló, és az eredmény magasabb lesz.Interferencia léphet fel, ha a reakcióelegy pH-ja 12,6 alatt van az összes reagens oldat hozzáadása után.Az erősen savas és pufferolt minták általában ezt okozzák.A nagy koncentrációban hidroxidként kicsapódó fémionok szintén rossz reprodukálhatóságot okozhatnak36,37.
Az eredmények azt mutatták, hogy az ivóvízben lévő illékony fenolok, cianidok, anionos felületaktív anyagok és ammónia-nitrogén egyidejű meghatározására szolgáló folyamatos áramláselemző módszer jó linearitású, alacsony kimutatási határértékkel, jó pontossággal és visszanyeréssel rendelkezik.Nincs lényeges különbség a nemzeti szabványos módszerhez képest.Ez a módszer gyors, érzékeny, pontos és könnyen használható módszert biztosít nagyszámú vízminta elemzésére és meghatározására.Különösen alkalmas négy komponens egyidejű kimutatására, és az észlelési hatékonyság jelentősen javul.
SASAK.Szabványos vizsgálati módszer az ivóvízhez (GB/T 5750-2006).Peking, Kína: Kínai Egészségügyi és Mezőgazdasági Minisztérium/Kínai Szabványügyi Hivatal (2006).
Babich H. et al.Fenol: A környezeti és egészségügyi kockázatok áttekintése.Rendes.I. Farmakodinamika.1, 90–109 (1981).
Akhbarizadeh, R. et al.Új szennyeződések a palackozott vízben szerte a világon: a legújabb tudományos publikációk áttekintése.J. Veszélyes.alma Mater.392, 122–271 (2020).
Bruce, W. et al.Fenol: veszélyjellemzés és expozíciós válasz elemzése.J. Environment.a tudomány.Egészségügy, C rész – Környezet.rákkeltő anyag.Ökotoxikológia.Szerk.19, 305–324 (2001).
Miller, JPV et al.A p-terc-oktil-fenolnak való hosszú távú expozíció lehetséges környezeti és emberi egészségi veszélyeinek és kockázatainak áttekintése.horkant.ökológia.kockázatértékelés.belső folyóirat 11, 315–351 (2005).
Ferreira, A. et al.A fenol és a hidrokinon expozíció hatása a leukocita migrációra a tüdőbe allergiás gyulladással.I. Wright.164 (S függelék), S106-S106 (2006).
Adeyemi, O. et al.Az ólommal, fenollal és benzollal szennyezett víz albínó patkányok májára, veséjére és vastagbelére gyakorolt hatásának toxikológiai értékelése.élelmiszer-kémia.I. 47, 885–887 (2009).
Luque-Almagro, VM et al.A cianid és cianoszármazékok mikrobiális lebontásának anaerob környezetének vizsgálata.Jelentkezzen mikrobiológiára.Biotechnológia.102, 1067–1074 (2018).
Manoy, KM et al.Akut cianid toxicitás aerob légzésben: Merburn értelmezésének elméleti és kísérleti alátámasztása.Biomolekulák.Concepts 11, 32–56 (2020).
Anantapadmanabhan, KP Tisztítás kompromisszumok nélkül: A tisztítószerek hatása a bőr védőrétegére és gyengéd tisztítási technikák.bőrgyógyászat.Ott.17, 16–25 (2004).
Morris, SAW et al.Anionos felületaktív anyagok emberi bőrbe való behatolási mechanizmusai: A monomer, micelláris és szubmicelláris aggregátumok behatolásának elméletének feltárása.belső J. Kozmetika.a tudomány.41, 55–66 (2019).
US EPA, US EPA Ammónia édesvíz minőségi szabvány (EPA-822-R-13-001).Az Egyesült Államok Környezetvédelmi Ügynöksége Vízgazdálkodási Hivatala, Washington, DC (2013).
Constable, M. et al.Az ammónia ökológiai kockázatértékelése a vízi környezetben.horkant.ökológia.kockázatértékelés.belső folyóirat 9, 527–548 (2003).
Wang H. et al.Vízminőségi szabványok az összes ammónia-nitrogénre (TAN) és a nem ionizált ammóniára (NH3-N), valamint ezek környezeti kockázatai a Liaohe folyóban, Kínában.Chemosphere 243, 125–328 (2020).
Hassan, CSM et al.Új spektrofotometriás módszer galvanizáló szennyvízben lévő cianid meghatározására szakaszos áramlású befecskendezéssel Taranta 71, 1088–1095 (2007).
Igen, K. et al.Az illékony fenolokat spektrofotometriásan határoztuk meg, oxidálószerként kálium-perszulfátot és 4-amino-antipirint használva.állkapocs.J. Neorg.végbélnyílás.Kémiai.11, 26–30 (2021).
Wu, H.-L.várjon.Az ammónia-nitrogén spektrumának gyors kimutatása vízben kéthullámú spektrometriával.hatótávolság.végbélnyílás.36, 1396–1399 (2016).
Lebedev AT et al.Félig illékony vegyületek kimutatása zavaros vízben GC×GC-TOF-MS módszerrel.Bizonyíték arra, hogy a fenolok és a ftalátok kiemelt szennyező anyagok.Szerda.szennyezni.241, 616–625 (2018).
Igen, Yu.-Zh.várjon.A HS-SPEM/GC-MS ultrahangos extrakciós módszert 7 féle illékony kénvegyület kimutatására használtuk a műanyag pálya felületén.J. Szerszámok.végbélnyílás.41, 271–275 (2022).
Kuo, Connecticut et al.Ammóniumionok fluorometriás meghatározása ionkromatográfiával a ftálaldehid oszlop utáni származékképzésével.J. Chromatography.A 1085, 91–97 (2005).
Villar, M. et al.Új módszer a teljes LAS gyors meghatározására szennyvíziszapban nagy teljesítményű folyadékkromatográfiával (HPLC) és kapilláris elektroforézissel (CE).végbélnyílás.Chim.Acta 634, 267–271 (2009).
Zhang, W.-H.várjon.Illékony fenolok áramlásos injektálásos elemzése környezeti vízmintákban CdTe/ZnSe nanokristályok felhasználásával fluoreszcens szondákként.végbélnyílás.Lény anális.Kémiai.402, 895–901 (2011).
Sato, R. et al.Optóda detektor fejlesztése anionos felületaktív anyagok meghatározására flow-injekciós elemzéssel.végbélnyílás.a tudomány.36, 379–383 (2020).
Wang, D.-H.Áramláselemző anionos szintetikus mosószerek, illékony fenolok, cianid és ammónia nitrogén egyidejű meghatározására ivóvízben.állkapocs.J. Egészségügyi Laboratórium.technológiákat.31, 927–930 (2021).
Moghaddam, MRA et al.Szerves oldószermentes, magas hőmérsékletű folyadék-folyadék extrakció, kombinálva egy új kapcsolható mélyeutektikus diszperzív folyadék-folyadék mikroextrakcióval három fenolos antioxidáns kőolajmintákban.mikrokémia.Journal 168, 106433 (2021).
Farajzade, MA et al.Szennyvízmintákból fenolos vegyületek új szilárd fázisú extrakciójának kísérleti vizsgálatai és sűrűségfunkcionális elmélete GC-MS meghatározás előtt.mikrokémia.Journal 177, 107291 (2022).
Jean, S. Illékony fenolok és anionos szintetikus mosószerek egyidejű meghatározása ivóvízben folyamatos áramlási elemzéssel.állkapocs.J. Egészségügyi Laboratórium.technológiákat.21, 2769–2770 (2017).
Xu, Yu.Illékony fenolok, cianidok és anionos szintetikus mosószerek áramlási elemzése vízben.állkapocs.J. Egészségügyi Laboratórium.technológiákat.20, 437–439 (2014).
Liu, J. et al.A szárazföldi környezeti mintákban található illékony fenolok elemzési módszereinek áttekintése.J. Szerszámok.végbélnyílás.34, 367–374 (2015).
Alakhmad, V. et al.Membránmentes elpárologtatót és érintésmentes átfolyásmérőt tartalmazó átfolyó rendszer kifejlesztése oldott ammónium és szulfidok meghatározására a csatornavízben.Taranta 177, 34–40 (2018).
Troyanovich M. et al.Az áramlásos befecskendezési technikák a vízelemzésben a közelmúltbeli fejlemények.Molekuly 27, 1410 (2022).
Feladás időpontja: 2023.02.22